PLoS ONE: ERG induserer epigenetisk Aktivering av Tudor Domain-inneholder protein 1 (TDRD1) i ERG Omorganisering-positiv Prostate Cancer

Abstract

Bakgrunn

Overuttrykte ERG transkripsjonsfaktor på grunn av genomisk

ERG

-rearrangements definerer en egen molekylær subtype av prostatakreft. En av konsekvensene av ERG opphopning er modulering av cellens genuttrykk profil. Tudor domene som inneholder protein 1 genet (

TDRD1

) ble rapportert å være forskjellig uttrykt mellom

TMPRSS2: ERG

-negativ og

TMPRSS2: ERG

-positivt prostatakreft. Målet med vår studie var å gi en mekanistisk forklaring på transkripsjonen aktivering av

TDRD1

i ERG omorganisering-positive prostatakreft.

Metodikk /hovedfunnene

genuttrykk målinger av sanntids kvantitativ PCR viste en bemerkelsesverdig co-uttrykk for

TDRD1 Hotell og

ERG plakater (r

2 = 0,77), men ikke

ETV1 plakater (r

2 0,01) i menneskelig prostata kreft

in vivo

. DNA metylering analyse av MeDIP-Seq og bisulfite sekvensering viste at

TDRD1

uttrykk er omvendt korrelert med DNA metylering på

TDRD1

arrangøren

in vitro Hotell og

in vivo product: (ρ = -0,57). Følgelig demetylering av

TDRD1

promoter i

TMPRSS2: ERG

-negative prostatakreftceller ved DNA metyltransferase hemmere resulterte i

TDRD1

induksjon. Ved manipulering av

ERG

dosering gjennom genet taushet tvunget uttrykk vi vise at ERG styrer tap av DNA metylering på

TDRD1

promoter-forbundet CpG island, som fører til

TDRD1

overekspresjon.

Konklusjon /Betydning

Vi viser at ERG er i stand til å forstyrre en vev-spesifikk DNA metylering mønster på

TDRD1

promoter. Som et resultat,

TDRD1

blir transcriptionally aktivert i

TMPRSS2: ERG

-positivt prostatakreft. Gitt forekomsten av ERG fusjoner,

TDRD1

overekspresjon er et vanlig endring i menneskelig prostata kreft som kan utnyttes for diagnostiske eller terapeutiske prosedyrer

Citation. Kacprzyk LA, Laible M, Andrasiuk T, Brase JC, Borno ST, Fälth M, et al. (2013)

ERG

induserer epigenetisk Aktivering av Tudor Domain-inneholder protein 1 (

TDRD1

) i

ERG

Omorganisering-positiv Prostate Cancer. PLoS ONE 8 (3): e59976. doi: 10,1371 /journal.pone.0059976

Redaktør: Bandana Chatterjee, University of Texas Health Science Center, USA

mottatt: 04.09.2012; Godkjent: 19 februar 2013; Publisert: 29 mars 2013

Copyright: © 2013 Kacprzyk et al. Dette er en åpen-tilgang artikkelen distribueres under betingelsene i Creative Commons Attribution License, som tillater ubegrenset bruk, distribusjon og reproduksjon i ethvert medium, forutsatt den opprinnelige forfatteren og kilden krediteres

Finansiering:. Dette arbeidet ble støttet av det tyske føderale Kunnskapsdepartementet (https://www.bmbf.de/en/) i rammen av Program for medisinsk genomforskning (NGFNplus; IG-Prostate Cancer, 01GS0890 og 01GS0891, IG-Mutanom , 01GS08107, Intestinal Modifier, 01GS08111) samt Helmholtz International Graduate School for kreftforskning av DKFZ ((www.dkfz.de/phd/)). Finansiører hadde ingen rolle i studiedesign, datainnsamling og analyse, beslutning om å publisere, eller utarbeidelse av manuskriptet

Konkurrerende interesser:.. Forfatterne har erklært at ingen konkurrerende interesser eksisterer

Innledning

om lag halvparten av menneskelige prostata kreft tilfeller identifisert av PSA-screening havne genomiske rearrangements der androgen-responsive regulatoriske elementer er sidestilt til gener som koder for transkripsjonsfaktorer i ETS familien [1] – [3]. Som et resultat, ETS gener blir koplet til androgenreseptoren (AR) signalering og er overuttrykt i fusjons-positive prostatakreft [4] – [6]. Den mest utbredte av disse genomiske rearrangementer,

TMPRSS2 product::

ERG

genfusjon, fører til en sterk overekspresjon av ERG transkripsjonsfaktor som ellers er fraværende i celler av prostata epitelet [7] ; under fysiologiske betingelser

ERG

viser en vev-ekspresjon begrenset mønster og blir transkribert i det hematopoetiske linage [8] og endoteliale celler [9]. Spørsmålet om hvordan ERG opphopning påvirker biologien til prostata kreft celler

in vitro Hotell og

in vivo

har fått en betydelig interesse. Inntil nå ble ERG foreslått å modulere fenotypen av prostata kreftceller ved en lang rekke fremgangsmåter, inkludert: avbrudd av AR-signalering [10], aktivering av c-myc signalering [11] og østrogen reseptor nettverk [12], aktivering av Wnt sti og induksjon av epitelial til mesenchymale overgang [13], fremme celle invasjon [14], fysisk interaksjon med PARP1 [15] og aktivering av TGF-β /BMP signaliserer [16]. Svulster skjuler ERG fusjon ble også funnet å bli beriket for tap av

PTEN

tumor suppressor [17], [18]. Følgelig, i musemodeller av prostatakreft ERG ble vist å samarbeide med PI3K vei å kjøre kreftutvikling [19], [20]. Akkumulering av ERG ble også funnet å være forbundet med en endret DNA-metylering mønster i prostatakreftceller [10], [21], [22]. Analyse av prostatakreft transkriptomet utføres av oss og andre viste at svulster huse

TMPRSS2

:

ERG

fusjon aksje en unik genekspresjon profil som i betydelig grad avviker fra profiler av godartet prostatavevet og ondartede svulster mangler fusjons [1], [10], [12], [13], [16], [23]. Spesielt er tumorer som overuttrykker ERG karakterisert ved transcriptional modulering av gener som er involvert i de Wnt og TGF-β /BMP-trasé [16], β-østradiol nettverk [12], [23] og NF-kB veien [24].

Blant gener deregulerte i

ERG

-rearranged prostatakreft, minst to uavhengige studier identifisert Tudor domene som inneholder protein 1 (

TDRD1)

som den mest forskjellig uttrykt gen mellom

ERG

omorganisering-positive og -negative prostatakreft, bortsett fra

ERG

seg selv [16], [23]. I likhet med

ERG

,

TDRD1

ikke transkribert i normal prostata epitel [25], [26].

TDRD1

ble opprinnelig identifisert som en kreft /testikkel antigen, dvs. et gen som uttrykkes i testiklene og kreft, men taus hos voksne somatiske vev [26]. Dens mus ortolog,

Tdrd1

, er uttrykt i spermatogenesis hvor det fungerer i konservert Pirna vei å undertrykke aktiviteten til line1 retrotransposons ved metylering [27]. En fersk studie i sebrafisk antydet at Tdrd1 fungerer som en molekylær stillas for Piwi proteiner, piRNAs og Pirna mål [28]. I både mus og sebrafisk, er Tdrd1 nødvendig for en korrekt funksjon av Pirna sti og

Tdrd1

knockout i mus resulterer i en defekt spermatogenesis [28], [29].

Her har vi rapport som

ERG Hotell og

TDRD1

er co-uttrykt i humane prostata kreft og vi gir en mekanistisk forklaring på den observerte co-uttrykk. Vi viser at ERG aktiverer

TDRD1

transkripsjon ved å fremkalle tap av DNA metylering på

TDRD1

promoter-forbundet CpG island. Vi foreslår at dette epigenetisk følge av

TMPRSS2:. ERG

fusjon representerer en ny mekanisme som kan forklare en del av transkripsjonsmodule indusert av ERG i menneskelig prostatakreft

Materialer og Metoder

Etikk erklæringen

Prostata vevsprøver ble oppnådd ved University Medical Center Hamburg Eppendorf. Godkjenning for studien ble hentet fra den lokale etikkutvalget og alle pasientene ble enige om å ytterligere vev prøvetaking til vitenskapelige formål.

Prostata vevsprøver, Genome-wide Expression Profilering og Metylering analyse

Detaljer om menneskelig prøvene samling, utvinning av RNA, konvertering til cDNA og genom-wide uttrykk profilering er beskrevet andre steder [16]. DNA-ekstraksjon og genome-wide metylering analyse av MeDIP-Seq er beskrevet andre steder [22]. Dataene fra genom-wide uttrykk profilering og genome-wide metylering analyse er offentlig tilgjengelig i Gene Expression Omnibus database (deponeringsnummer GSE29079 og GSE35342).

TMPRSS2: ERG

fusjon status ble bestemt ved PCR ved bruk tidligere beskrevne primere [30] og ved qPCR [16]. Prøvene, som både mRNA uttrykk og DNA metylering data var tilgjengelig, ble inkludert i analysen.

Cell Culture

Vcap, NCI-H660, LNCaP, DU145, PC-3, og RWPE -1-celler ble erholdt fra ATCC (Manassas, VA, USA). BPH-1 celler var en slags gave av Doris Mayer (DKFZ, Heidelberg). K-562 og KG-1 celler ble gitt av Christoph Plass og Peter Krammer, henholdsvis (DKFZ, Heidelberg). MOLT4 og CMK-celler ble oppnådd fra DSMZ (Braunschweig, Tyskland). Vcap celler ble opprettholdt i DMEM medium (Gibco, Life Technologies, Carlsbad, CA, USA) supplert med 10% FBS (Gibco). NCI-H660-celler ble dyrket i RPMI-1640 (Gibco) supplementert med 5% FBS (Gibco), 2 mM L-gluatmine, 0,005 mg /ml insulin, 0,01 mg /ml transferrin, 30 nM natriumselenitt, 10 nM hydrokortison og 10 nM beta-østradiol (alle fra Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA). LNCaP og DU145 ble opprettholdt i RPMI-1640 (Gibco) supplementert med 10% FBS. PC-3-celler ble dyrket i F12-K-medium (ATCC) supplert med 10% FBS. RWPE1 celler ble dyrket i keratinocytt serumfritt medium supplert med 0,05 mg /ml bovint pituary ekstrakt og 5 ng /ml rekombinant EGF (Gibco). BPH1 celler ble dyrket i RPMI-1640 medium (Gibco) supplementert med 10% FBS og 20 ng /ml 5α-dihydrotestosteron (Sigma). K-562 og MOLT-4-celler ble dyrket i RPMI-1640 og supplert med 10% varme-inaktivert FBS, KG-1 og CMK-celler ble dyrket i RPMI-1640 supplert med 20% varme-inaktivert FBS.

Generering av Stabile LNCaP Clones og Induksjon av transgene uttrykk

ERG-kodesekvensen (eksoner 4-11 fra NM_004449.3), noe som tilsvarer TMPRSS2: ERG fusion T1 /E4 [31], ble forsterket fra NM_004449. 3-holdig plasmid (Genomics og proteomikk Kjerne Facility, DKFZ) ved PCR ved bruk primere: forover GCAGGCTCCACCATGACCGCGTCCTCCTCCAG, revers CAAGAAAGCTGGGTCTTAGTAGTAAGTGCCCAGAT. Stabilt transfekterte LNCaP-kloner ble samlet som tidligere beskrevet [32]. Transgene uttrykk ble indusert med 50 ng /ml doksycyklin (Sigma).

RNA Utvinning og revers transkripsjon

Total RNA ble isolert fra eksponentielt voksende cellelinjer ved hjelp RNeasy Mini Kit (Qiagen, Hilden ) etter produsentens anvisninger. cDNA syntese ble performend bruker Super III revers transkriptase (Life Technologies) og oligo-dT primere (Sigma-Aldrich) etter produsentens instruksjoner. For måling av LINE1-ORF2 mRNA, ble total RNA behandlet med Turbo DNase (Life Technologies) for å fjerne kontaminerende genomisk DNA. DNase-behandlet RNA ble deretter renset ved hjelp RNeasy MinElute Opprydding Kit (Qiagen) og utsatt for revers transkripsjon ved hjelp RevertAid H Minus First Strand cDNA Synthesis Kit (Fermentas, Burlington, Canada) og tilfeldige heksamerprimere.

Kvantitativ RT PCR

genuttrykk ble målt på LightCycler 480 real-Time PCR System (Roche, Mannheim, Tyskland). cDNA ekvivalent av 10 ng total-RNA ble anvendt per brønn. Alle målinger ble utført in triplo. TAQMAN analyser (Applied Biosystems) ble kjørt med 2x absolutt QPCR Mix (Abgene, Thermo Fischer, Epsom, UK). Universal Probe Library (UPL) systemanalyser (Roche) ble kjørt ved hjelp av 480 prober Master (Roche). Rå Cp verdier ble beregnet av Roche LightCycler 480 programvaren med andre deriverte maksimal metoden. Analyser og primer sekvenser er listet opp i tabell S1 sammen med tilsvarende tall tallene. Expression nivåer er presentert som absolutte verdier (Cp) eller som uttrykk i forhold til en intern referanse genet (ved hjelp ΔCp metoden).

Western Blotting

eksponentielt voksende celler ble lysert med RIPA buffer (50 mM Tris-HCl pH 8, 150 mM NaCl, 1% NP-40, 0,5% natriumdeoksycholat, 0,1% SDS) supplert med 5 mM EDTA og HALT protease inhibitor cocktail (Pierce, Thermo Fisher Scientific, Rockford, IL). Proteinkonsentrasjoner ble bestemt med BCA Protein Assay kit (Pierce). Med mindre annet er angitt, ble 30 mikrogram av protein lysates separert i 10% SDS-PAGE-geler og blottet på nitrocellulosemembraner (MACHEREY-NAGEL, Düren, Tyskland) og analysert med antistoffer som er oppført i tabell S1. Signaler ble oppdaget ved hjelp av ECL substrat løsning [33] og spilt med Fusion-SL 3500 WL bildet oppkjøpet system (Vilber Lourmat, Marne-la-Vallée, Frankrike).

siRNA-mediert Gene Dempe

Alle siRNAs brukes i studien ble syntetisert av Dharmacon (Thermo Fisher Scientific, Epsom, UK) og resuspendert i 1x siRNA Buffer (Dharmacon). Med mindre annet er angitt, ble cellene sådd ut en dag før transfeksjon ved sammenløpet av 50-70%. siRNA transfeksjon ble utført ved hjelp Lipofectamine RNAi Max (Life Technologies) i henhold til produsentens instruksjoner. Transfeksjon kompleksene ble fremstilt i serumfritt OptiMem medium (Gibco) og tilsatt til en komplett vekstmedium i 20:80 volum /volum forhold. Sluttkonsentrasjoner på sirnas var 50 nM (ikke-måls basseng siRNA, ERG siRNA) eller 25 nM (TDRD1 sirnas). Alle siRNA brukt i studien er oppført i tabell S1.

CpG Island Definisjon og Bisulfite DNA sekvense

TDRD1

-promoter forbundet CpG island ble definert i henhold til standard kriterier gitt av UCSC Genome Browser (https://genome.ucsc.edu/). Genomisk DNA ble ekstrahert fra celler ved hjelp av QIAamp DNA blod Mini Kit (Qiagen). Natriumbisulfitt omdannelse av DNA ble utført med EpiTect Bisulfite Kit (Qiagen) ved anvendelse av 1 pg av genomisk DNA. Den 525-bp DNA-fragment inneholdende TDRD1 promoter-assosierte CpG-øy ble amplifisert med HotStarTaq DNA Polymerase (Qiagen) ved bruk av primere som er oppført i tabell S1. PCR-produktet ble klonet inn i pCR2.1 vektor ved hjelp av TOPO TA-kloningssett (Life Technologies). TOP10 kjemisk kompetente celler (Life Technologies) ble transformert med ligerings produktet. Etter blå-hvit screening, ble plasmider fra koloniene som inneholdt innsatsen utsettes for Sanger-sekvensering (GATC, Konstanz, Tyskland). Raw Sanger-sekvensering leser ble analysert for metylering hendelser ved hjelp av elektroniske verktøy BISMA [34].

5-aza-2′-deoxycytidine Behandling

LNCaP eller Vcap celler ble sådd ut på poly-L- lysin (Sigma-Aldrich) belagte 12-brønners plater med lav tetthet. Som i det følgende dag ble cellene behandlet med bærer (0,1% DMSO, Applichem, Darmstadt, Tyskland) eller de indikerte konsentrasjoner av 5-aza-2′-deoksycytidin (Sigma-Aldrich) i fem påfølgende dager. Hver 24. time, vekstmedium ble erstattet med en nylaget medium som inneholder enten 5-aza-2′-deoxycytidine eller kjøretøy.

celleviabilitet analysen

For levedyktighet analysen, 2.5×10

4 VCap-celler ble sådd i svart bunn 96-brønners plater (Perkin Eimer, Waltham, MA, USA) i 80μl av den normale vekstmediet. Etter 24 timer ble cellene transfektert med sirnas som beskrevet ovenfor og denne dagen ble referert til som «dag 1». Celleviabilitet ble vurdert med CellTiter-Blue celleviabilitet Assay (Promega Corporation, WI, USA) på dag 1, 3, 5, 7 og 9 i henhold til produsentens instruksjoner. Fluorescens ble spilt inn med Tecan Infinite M200 plateleser (Tecan Group Ltd, Männedorf, Sveits).

Statistisk dataanalyse

Alle data ble analysert ved hjelp GraphPad Prism 5.04. Kvantitative data er vist som gjennomsnitt ± SEM (standardfeil av middelverdien) beregnet fra alle utførte eksperimenter, med mindre annet er angitt. Alle sammenligninger mellom eksperimentelle grupper ble utført ved Mann-Whitney-Wilcoxon test med Bonferroni korreksjon (* P 0,05, ** P 0,01, *** P 0,001, **** P 0,0001). Spearman (

ρ

) og Pearson (r) korrelasjonskoeffisienter ble beregnet med GraphPad Prism 5.04.

Resultater

TDRD1

er co-uttrykkes med

ERG

men ikke med

ETV1

i human prostate Cancer

Vår tidligere uttrykk profilering studiet av menneskelige prostata kreft prøvene viste at

TDRD1

er, bortsett fra

ERG

, den mest forskjellig uttrykt gen mellom

TMPRSS2

:

ERG

-negativ og -positive svulster [16]. Vi utførte derfor en korrelasjonsanalyse på data fra 93 prostata vevsprøver (46 godartet, 30

TMPRSS2: ERG

-negativ, 17

TMPRSS2: ERG

-positive prostatakreft) og fant at mRNA nivåer av

ERG Hotell og

TDRD1

målt av human Exon 1,0 ST Array er bemerkelsesverdig korrelert på tvers av alle prøvene (r

2 = 0,84), noe som tyder på en mekanistisk kobling mellom de to gener. I kontrast,

TDRD1

ble ikke co-uttrykkes med

ETV1 plakater (r

2 = 0,05) som er en ETS transkripsjonsfaktor funnet å være sporadisk omorganisert i prostatakreft. For å underbygge disse observasjonene, målte vi

TDRD1

,

ERG Hotell og

ETV1

mRNA nivåer med kvantitativ RT-PCR i samme sett av prøver. Igjen,

TDRD1

uttrykk ble funnet å korrelere med

ERG plakater (r

2 = 0,77), men ikke med

ETV1 plakater (r

2 0,01 ) ekspresjon (fig. 1a). For å gi en uavhengig validering av funnene våre, spørres vi Oncomine databasen [35] med «TDRD1» og «prostatakreft» som søkeord. Analysen av to identifiserte studier støtter våre observasjoner: i data av Grasso et al. [36]

ERG

ble den øverste genet co uttrykt med

TDRD1

. I dataene på Taylor et al. [17],

TDRD1

ble funnet å være co uttrykkes med

ERG plakater (r

2 = 0,55), men ikke med

ETV1 plakater (r

2 = 0,02) over 149 primær prostatakreft. For å forklare den observerte co-uttrykk, vi ansatt cellulære modeller av prostatakreft, inkludert celler som representerer godartet (RWPE-en, BPH-1), fusion-negative (PC-3, DU145),

ERG

-rearranged (Vcap, NCI-H660) og

ETV1

-rearranged (LNCaP) prostatakreft. Genuttrykk målinger i prostata cellelinjer viste at mens

TDRD1

mRNA nivåer var uavhengig av

ETV1

uttrykk, finnes en tydelig sammenheng mellom

TDRD1 Hotell og

ERG

uttrykk

in vitro plakater (fig. 1b). Ingen av cellelinjer uten

ERG

overekspresjon uttrykt

TDRD1

, mens NCI-H660 og Vcap cellelinjer, som begge er bærere av

TMPRSS2: ERG

fusion, uttrykte høy nivåer av

TDRD1 plakater (fig. 1b). Vi spurte om de høye nivåene av både

TDRD1 Hotell og

ERG

messenger RNA i ERG-positive prostataceller sette til betydelige mengder av de respektive proteiner og funnet ut at Vcap celler uttrykker ERG og TDRD1 på nivåer påvises ved western-blotting (fig. 1c). Basert på disse første resultatene, bestemte vi oss for å bruke Vcap celler som

in vitro

modell for å studere mekanistiske forholdet mellom

ERG Hotell og

TDRD1

gener i

ERG –

omorganiseres prostatakreft

(A) korrelasjon analyse av mRNA nivåer målt ved QRT-PCR i

TMPRSS2: ERG

-negativ (ERG-, n = 30) og

TMPRSS2: ERG

-positivt (ERG +, n = 17) prostatakreft samt tilstøtende godartet prostatavevet (n = 46). Pearson korrelasjonskoeffisient er vist. (B) Analyse av mRNA uttrykk i prostata cellelinjer ved QRT-PCR. To uavhengige eksperimenter ble utført in triplo. Menneskelig testis RNA ble brukt som positiv kontroll for

TDRD1

uttrykk. (C) Analyse av protein ekspresjon i prostata cellelinjer ved western blotting. (D) Analyse av mRNA-ekspresjon i hematopoetiske kreftcellelinjer ved QRT-PCR. To uavhengige eksperimenter ble utført i tre eksemplarer.

TDRD1

ikke er co-uttrykkes med

ERG

i Hematopoietic Kreft

Noen blodkreft kreftformer overuttrykker ERG protein [37], [38], og det er kjent at myeloid, T- og Bcell leukemier er avhengig av ERG for vedlikehold [39], [40]. Vi derfor undersøkt

ERG Hotell og

TDRD1

co-uttrykk ved QRT-PCR i et panel av cellelinjer som representerer ulike blodkreft kreft. Selv om vi har oppdaget høye nivåer av

ERG

mRNA i flere kreftcellelinjer avledet fra det hematopoetiske linjen, det tilsvarende uttrykk for

TDRD1

mRNA var omtrent 50 ganger lavere enn i VCap-celler (fig. 1d). For å utvide vår analyse utover cellelinjer, vi sammenlignet

ERG Hotell og

TDRD1

mRNA uttrykk i prostata vev og i cytogenetisk unormal akutt myelogen leukemi (CA-AML) målt ved samme plattform (human Exon 1.0 ST Array) [41]. I motsetning til våre observasjoner i prostatakreft (r

2 = 0,84),

ERG Hotell og

TDRD1

ble ikke co-uttrykt i CA-AML (r

2 = 0,07 ).

ERG

har også blitt rapportert å være overuttrykt i Ewings sarkom [42] – [45]. Vi dermed analysert tilgjengelig genuttrykk profilering studier av Ewing sarkom svulster for

TDRD1 Hotell og

ERG

uttrykk [46], [47]. I motsetning til prostata kreft, var det ingen ko-ekspresjon av

ERG

og

TDRD1

i en hvilken som helst av disse studiene (R «> 2 = 0,03 og 0,02, henholdsvis). Dette tyder på at co-uttrykk for

ERG Hotell og

TDRD1

er spesifikk for prostatakreft.

ERG transkripsjonsfaktor er nødvendig for å opprettholde høy

TDRD1

Expression i

TMPRSS2: ERG

-positive Cells

Samtidig uttrykk for to genene kan forklares med blant annet regulering av et av genene av andre eller av deres felles regulering i en feed-frem loop. For å teste disse mulighetene, utarmet vi enten ERG eller TDRD1 protein i Vcap celler ved RNA interferens og bestemt mRNA og protein uttrykk av både gener. Stanse av

ERG

med 80% virkningsgrad resulterte i 3,9 ganger nedregulering av

TDRD1

mRNA 72 timer etter transfeksjon (P . 0,0001, figur 2a). I kontrast, stanse av

TDRD1

førte ikke til noen endringer i

ERG

mRNA uttrykk. Analyse av de tilsvarende protein nivåer av western blot viste at stanse av

ERG Hotell og

TDRD1

gener var svært effektive, noe som fører til en fullstendig nedbryting av både proteiner fra cellene (fig. 2b). Mens knockdown av

ERG

forårsaket en dyp nedregulering av TDRD1 protein på 72 timer, ingen slike effekter på ERG ble oppdaget etter å kneble av

TDRD1

genet. Et lignende uttrykk mønster ble også observert ved 48 timer etter transfeksjon (data ikke vist). I konklusjonen, er en konstant tilstedeværelse av ERG er nødvendig for å opprettholde høy uttrykk for

TDRD1

i Vcap celler og den observerte co-uttrykk av de to genene i prostatakreft kunne forklares med en ensrettet aktivering av

TDRD1

gjennom ERG transkripsjonsfaktor.

(A)

ERG Hotell og

TDRD1

mRNA uttrykk nivåer i Vcap celler målt 72 timer etter genet stanse med siRNAs. Tre uavhengige eksperimenter ble utført in triplo. (B) ERG og TDRD1 protein uttrykk i Vcap celler 72 timer etter genet stanse med sirnas

TDRD1

Arrangøren-forbundet CpG Island er Hypomethylated i

TMPRSS2. ERG

-positivt prostatakreft

uttrykk for

TDRD1

, sammen med at andre bakterie linje-spesifikke gener, er kjent for å bli undertrykt i somatiske vev ved epigenetisk stanse [26], [48 ]. Vi undersøkte derfor metylering status for

TDRD1

promoter og tilhørende CpG øy i sammenheng med

ERG

rearrangements. Vi inspisert metylering av DNA rundt

TDRD1

transkripsjon start stedet i prostatakreft, som vi hadde analysert av MeDIP-Seq [22], og fant denne regionen skal forskjellig metylert mellom svulster med og uten

TMPRSS2: ERG

genet fusjon. Nærmere bestemt en kb regionen spenner over

TDRD1

promoter-forbundet CpG island ble betydelig hypomethylated i

TMPRSS2: ERG

-positive svulster i forhold til godartet og

TMPRSS2: ERG

-negative tumorer (P . 0,0001, figur 3a). En 500-bp vindu umiddelbart nedstrøms for CpG øya viste ingen forskjeller i DNA-metylering mellom ERG-negative og ERG-positive tumorer (P = 0,41, fig. 3a). Videre DNA sekvens flankerer den antatte

TDRD1

arrangøren ble ikke ulikt metylert mellom noen av de tre gruppene (P 0,05), noe som indikerer at differensial DNA metylering skjer i direkte nærhet av

TDRD1

transkripsjonell starte nettstedet, men ikke rundt det. Av notatet, det gjennomsnittlige nivået på

TDRD1

promoter metylering ble omvendt korrelert med

TDRD1

mRNA nivåer på tvers av alle 93 prøver (

ρ

= -0,57), noe som tyder på at tap av promoter metylering bidrar vesentlig til

TDRD1

overekspresjon i

TMPRSS2. ERG

fusion-positive prostatakreft (fig. 3b)

(A) Analyse av

TDRD1

promoter metylering i prostatakreft ved MeDIP-sekv. Verdiene representerer gjennomsnittet grad av DNA metylering av de 500 bp binger. (B) Korrelasjon analyse av

TDRD1

promoter metylering og

TDRD1

mRNA uttrykk i prostatakreft. Den Spearman korrelasjonskoeffisient vises.

ERG-indusert Tap av epigenetiske undertrykkelse på

TDRD1

Arrangøren er en Major Mekanisme

TDRD1

Aktivering

Siden forskjellig metylert regionen spredte CpG øy forbundet med

TDRD1

promoter og CpG øyer er kjent for å spille en rolle i å regulere transkripsjon [49], har vi utført bisulfite sekvensering av

TDRD1

-associated CpG øy i prostata cellelinjer. Vi fant at CpG øya var fullt metylert i godartede celler og ERG-negative kreftcellelinjer, med en gjennomsnittlig metylering i området fra 89,3% for LNCaP til 98,6% for PC-3 (fig. 4a). I kontrast CpG metylering var nesten helt fraværende i

TMPRSS2: ERG

-positive cellelinjer NCI-H660 og Vcap (11,4% og 0,7%, henholdsvis). Sammenligning av

TDRD1

mRNA nivåer (Fig. 1b) til DNA metylering av CpG-øya på

TDRD1

promoter (fig. 4a) viste en invers korrelasjon mellom de to parametrene over undersøkte cellelinjer, noe som var i samsvar med de tilsvarende data fra prostata-tumorer. Gitt sterk forskjeller i DNA metylering på

TDRD1

promoter mellom ERG-omorganiseres og gjenværende cellelinjer, vi hypotese at tap av DNA metylering på

TDRD1

arrangøren er den viktigste mekanismen ansvarlig for

TDRD1

aktivering. For å teste denne muligheten, behandlet vi ERG-negative LNCaP celler med DNA metyltransferase hemmer 5-aza-deoxycytidine (decitabine [50]). Etter fem dager med behandling med submicromolar konsentrasjoner av decitabine observerte vi en doseavhengig økning i ekspresjon av

GSTP1

gen som er kjent for å bli brakt til taushet ved metylering i LNCaP-celler [51] (fig. 4b). Spesielt,

TDRD1

mRNA ble oppregulert med mer enn 25 ganger. Derfor, etter økning i

TDRD1

mRNA nivåer ble TDRD1 protein påvises i LNCaP celler ved immunoblotting (Fig. 4b, innsats), noe som indikerer at tap av DNA metylering kan faktisk være nok til å kjøre

TDRD1

uttrykk.

(A) DNA metylering analyse av

TDRD1

promoter-forbundet CpG øy i prostata cellelinjer ved bisulfite sekvensering. Gjennomsnitt metylering nivået for hele CpG øy beregnet fra fem sekvenserte kolonier er vist (%). (B) Analyse av mRNA-ekspresjon i LNCaP-celler etter behandling med demethylating midlet 5-aza-2′-deoksycytidin. Sett: analyse av protein ekspresjon i LNCaP-celler etter behandling med 5-aza-2′-deoksycytidin. 75μg av protein lysat fra LNCaP celler ble brukt per kjørefelt. (C) Analyse av mRNA uttrykk i stabile LNCaP kloner overekspresjon

ERG

. To uavhengige eksperimenter ble utført in triplo. Sett inn: ERG uttrykk analyse på 48 timer i LNCaP kloner av western blotting. (D) Bisulfite sekvensering av

TDRD1

promoter-forbundet CpG øy i LNCaP celler 48 timer etter induksjon av ERG uttrykk med doksycyklin. (E) Bisulfite sekvensering av

TDRD1

promoter-forbundet CpG island 96 timer etter å kneble av

ERG

i Vcap celler. Dataene som vises i (D) og (E) er gjennomsnittet% av metylering av hele CpG island beregnet fra 11-12 sekvensert kloner.

For å sjekke om ERG kan etterligne effekten utøves på

TDRD1

uttrykk ved demetylering av LNCaP genomet, genererte vi stabile LNCaP celler som overuttrykker kodende sekvens av

TMPRSS2: ERG

fusion T1 /E4 i en induserbar måte. Induksjon av

ERG

uttrykk med doksycyklin førte til en nesten fem ganger økning i

TDRD1

mRNA, mens doksycyklin hadde ingen innflytelse på

TDRD1

uttrykk i LNCaP klone bærer Målt ekspresjonsvektor (fig. 4c). Vi har brukt bisulfite sekvensering for å analysere den tilsvarende DNA metylering status for

TDRD1

promoter-forbundet CpG island på ERG induksjon. ERG overekspresjon førte til hypometylering av

TDRD1

promoter-regionen i 27% av de undersøkte lene, mens vi ikke observere noen hypometylering på doxycycline behandling i den tomme vektor kontroll (Fig. 4d, fig. S1 A). Gitt at converse forsøket, dvs. uttømming av ERG i Vcap celler ved RNAi, har ført til nedregulering av TDRD1 uttrykk (Fig. 2) har vi også utført bisulfite sekvensering av

TDRD1

CpG øy etter ERG stanse i Vcap celler. På 96 timer etter transfeksjon, tie av ERG med 65% virkningsgrad resulterte i nesten tre ganger økning i gjennomsnittlig DNA metylering ved CpG island, fra 15,7% av denaturert CPGs i ikke-måls kontrollen til 45% i celler behandlet med siRNA målretting

ERG plakater (fig. 4e, fig. S1b).

de ovennevnte observasjonene viser at DNA metylering status for

TDRD1

promoter og dermed dets transkripsjonen aktivitet er mechanistically knyttet til nivåer av ERG transkripsjonsfaktor i prostatakreftceller.

Differensial rolle

TDRD1

i testikkel og prostatakreft

Den evolusjonære konservert Pirna pathway spiller en viktig rolle i mannlig kimcellelinje under sædcelle [52] – [54]. Komponentene av Pirna pathway virker til å undertrykke aktiviteten av transposable elementer, potensielt for å opprettholde integriteten av kimlinje kromosomer under genom-wide demetylering i opphavelige kjønnsceller [55] – [57]. Studier utført i mus og sebrafisk har vist at Tdrd1, ortolog av menneskelig

TDRD1

, er en del av Pirna sti som spesielt samhandler med Pirna-assosierte proteiner for å forsterke Pirna-mediert stanse av line1 retrotransposons. Følgelig tapet av Tdrd1 i mus ble vist å resultere i LINE1 derepresjon [27], [58]. Hos mennesker, fire ortologer koder for Pirna-assosierte proteiner finnes:

PIWIL1 Anmeldelser –

PIWIL4 product: [59]. [17].

Legg att eit svar